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徠卡DM2500顯微鏡熒光觀察細胞染色

更新時間:2025-06-16      點擊次數(shù):16

徠卡 DM2500 熒光顯微鏡細胞染色觀察


一、徠卡 DM2500 熒光顯微鏡核心配置與技術優(yōu)勢

1. 光學系統(tǒng)與熒光模塊


  • 光源類型

    • 藍光通道(BP450-490,適合 FITC、GFP,發(fā)射光 515-550nm);

    • 綠光通道(BP510-550,適合 TRITC、Texas Red,發(fā)射光 590nm 長通);

    • 紫外通道(BP330-385,適合 DAPI、Hoechst,發(fā)射光 420nm 長通)。

    • 標配 100W 汞燈(適合 DAPI、FITC、TRITC 等常規(guī)熒光染料),可選配 LED 固態(tài)光源(壽命長、穩(wěn)定性高)。

    • 濾光片組(Cube)

  • 物鏡兼容性

    • 高數(shù)值孔徑(NA)物鏡(如 Plan Apo 40×/0.95,油鏡 100×/1.3),減少熒光信號損失。


2. 與普通光學顯微鏡的差異


對比維度DM2500 熒光顯微鏡普通光學顯微鏡
光源特性高強度短波長(紫外 / 藍光),需濾光片分束可見光(白光),無需濾光片
成像原理熒光分子受激發(fā)后發(fā)射長波信號,需阻斷激發(fā)光透射 / 反射光直接成像
樣本要求熒光標記(染色或轉基因表達),需防淬滅處理染色或自然反差樣本


二、細胞染色樣本制備與熒光標記策略

(一)樣本固定與透化

  1. 固定方法
    • 醛類固定:4% 多聚甲醛(室溫 10-15min),保持細胞形態(tài),適合膜蛋白標記;

    • 甲醇 / 丙酮固定(-20℃,5min),增強膜通透性,適合胞內抗原(如細胞骨架)。

  2. 透化處理
    • 0.1% Triton X-100/PBS(室溫 5min),破壞細胞膜脂質雙分子層,便于抗體或染料進入胞內。

(二)熒光染色方案(按靶標分類)

染色類型常用染料 / 探針激發(fā) / 發(fā)射波長DM2500 濾光片選擇應用場景
細胞核染色DAPI358nm/461nm紫外通道(UV Cube)細胞周期、凋亡核形態(tài)觀察
細胞質標記FITC - 鬼筆環(huán)肽(肌動蛋白)495nm/519nm藍光通道(B Cube)細胞骨架動態(tài)分析
膜結構染色DiI(細胞膜)549nm/565nm綠光通道(G Cube)細胞融合、內吞作用研究
活細胞熒光Calcein-AM(活細胞示蹤)494nm/517nm藍光通道實時動態(tài)觀察(需避光培養(yǎng))
多重熒光染色Alexa Fluor 系列(如 488、594)對應激發(fā) / 發(fā)射波段多通道切換蛋白共定位、信號通路研究


三、DM2500 熒光觀察操作流程與參數(shù)優(yōu)化

(一)顯微鏡啟動與光路調節(jié)

  1. 光源預熱與濾光片切換
    • 汞燈需預熱 10-15min 至穩(wěn)定,避免頻繁開關(影響壽命);

    • 根據(jù)染料選擇對應濾光片組,通過轉盤切換(如觀察 DAPI 時插入 UV Cube)。

  2. ** K?hler 照明調節(jié) **
    • 調節(jié)聚光鏡光闌(縮小至 1/2 視野),調中聚光鏡后擴大光闌,確保光斑均勻覆蓋視野。

(二)熒光觀察步驟

  1. 低倍鏡定位與高倍鏡切換
    • 先用明場(10× 物鏡)找到細胞區(qū)域,標記后切換至對應熒光通道;

    • 切換高倍鏡(40×/100×)時,滴加鏡油(油鏡),緩慢調節(jié)細準焦螺旋至圖像清晰。

  2. 曝光與信號采集
    • 調節(jié)光源強度(通過 ND 濾光片,10%-50% 即可),避免強激發(fā)導致熒光淬滅;

    • 相機曝光時間:DAPI 約 50-100ms,F(xiàn)ITC 約 100-300ms,根據(jù)信號強弱微調(避免過曝產(chǎn)生偽影)。

(三)防淬滅與背景控制

  • 封片優(yōu)化

    • 用含抗淬滅劑的封片劑(如 Vectashield),蓋玻片四周用指甲油密封,減少熒光衰減;

  • 背景抑制

    • 樣本洗滌:PBS 洗 3 次,每次 5min,去除未結合染料;

    • 自發(fā)熒光排除:用陰性對照(未染色細胞)確定背景熒光水平。


四、熒光圖像采集與分析要點

  1. 拍攝參數(shù)標準化
    • 統(tǒng)一放大倍數(shù)、曝光時間、增益(Gain),便于組間對比;

    • 多通道成像時,采用 “順序掃描"(先拍短波長再拍長波長),避免串色(如 DAPI 激發(fā)光干擾 FITC 信號)。

  2. 定量分析指標
    • 熒光強度:用 ImageJ 軟件測量平均熒光密度(Integrated Density),排除背景值;

    • 共定位分析:通過 Pearson 系數(shù)(0-1)量化兩種熒光信號的重疊程度;

    • 細胞計數(shù):結合 DAPI 核染色,自動計數(shù)視野內細胞數(shù)量(需設置合適閾值)。

  3. 動態(tài)觀察(活細胞)
    • 配置加熱臺(37℃)和 CO?培養(yǎng)箱,維持細胞活性;

    • 采用間隔拍攝(如每 5min 一次),記錄熒光蛋白(如 GFP)的動態(tài)分布。


五、常見問題與解決方案

問題類型可能原因解決方案
熒光信號弱染料濃度不足 / 抗體效價低提高染色濃度,優(yōu)化孵育時間(4℃過夜)
背景熒光強非特異性結合 / 洗滌不充分增加洗滌次數(shù),用血清封閉(10% FBS)
圖像模糊物鏡污染 / 對焦不準用鏡頭紙沾無水乙醇擦拭物鏡,使用聚焦輔助工具
熒光淬滅快激發(fā)光過強 / 未用抗淬滅劑降低光源強度,封片時添加抗淬滅劑
串色(Cross-talk)濾光片光譜重疊 / 染料選擇不當更換窄帶濾光片,選擇光譜間隔大的染料(如 Cy3 與 Cy5)


六、延伸技術:DM2500 熒光顯微鏡的進階應用

  • FISH(熒光原位雜交)

    • 用于基因定位(如染色體熒光標記),需搭配紫外通道觀察探針信號;

  • 免疫熒光共染色

    • 結合兩種以上抗體(如 α-tubulin-FITC + γ-H2AX-TRITC),研究 DNA 損傷與微管關系;

  • 光漂白恢復(FRAP)

    • 通過高強度激光漂白局部熒光,利用 DM2500 的高靈敏度相機記錄熒光恢復速率,分析蛋白流動性。


七、安全操作與設備維護

  • 光源防護

    • 汞燈開啟時避免直視光源,佩戴紫外防護眼鏡;

  • 染料安全

    • 熒光染料(如 DAPI、PI)具潛在毒性,操作時戴手套,廢棄物按生物危害處理;

  • 日常維護

    • 每周用無塵布清潔載物臺和物鏡,每月檢查濾光片組是否有灰塵(影響光透過率)。


通過徠卡 DM2500 的精準熒光成像,可實現(xiàn)細胞結構、分子定位及動態(tài)過程的高分辨率觀察,為細胞生物學、分子醫(yī)學等研究提供關鍵技術支持。


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